co-ip试剂盒(植物)

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产品编号 规格 数量
jkr23001p

实验原理

免疫共沉淀(co-immunoprecipitation)是利用抗原与抗体之间的专一性作用为基础,从而用于研究蛋白质与蛋白质之间相互作用的一种方法。抗体与裂解液中相应的蛋白结合后,再与proteina/g偶联的sepharose或magneticbeads孵育,通过离心或者借助磁力架获得proteina/g磁珠-抗体-目的蛋白复合物,在高温及还原剂的作用下,抗原与抗体解离,收集上清,上清中包括抗体、目的蛋白和少量的杂蛋白,再通过western blot或质谱(ms)鉴定蛋白质。其原理图如下:

实验流程

试剂盒组分

常见问题

q1:通过coip后wb验证发现,没有想要的目的条带?

a:多方面原因造成:

1)有可能是样品被蛋白酶降解,对应的策略是需要添加蛋白酶抑制剂,所有操作保持4℃以下冰上操作且避免反复冻融。

2)有可能是抗体浓度太低导致条带较浅,则需要调整ip或wb抗体浓度,必要时设立浓度梯度,摸索最佳浓度。

3)抗体亲和力太低,选用适合于ip或者wb的抗体。

4)有的ip抗体未与磁珠结合,这种情况需选用适合ip的磁珠。

5)若tag未暴露在融合蛋白构象的表明,则需改变tag融合表达部位。

6)裂解液盐碱度太高,需用低盐碱度的裂解液。

7)抗体选择不当,更换抗体。

 

q2:通过coip后wb验证发现,虽然可见目的条带,但是背景很高:

a:多方面原因造成:

1)由非特异带白结合导致背景高,若要避色主特异性带白结合,则需要在无血清溶液中裂解细胞,且在免疫沉淀前用protein(a/g)磁珠预洗免疫沉淀后增加漂洗次数和盐碱度(高盐或去垢剂)。

2)实验仪器或试剂被污染,使用洁净的仪器及实际。

3)转移膜上的目特异吸附导致背景高,实验操作过程中载手套,使用镊子来取,不要接触膜转移面。

4)制备样品中可能有不完全溶释的大的蛋白复合体,则在制备样品后进行知暂超声处理(3次,每次5秒钟 ),然后离心,取上清后进行后续试验。

5)洗涤不彻底,则需要多次洗涤,并设新增加洗涤液中的nacl和去垢剂浓度。

6)可能有非特异性蛋白吸附于珠子上,则须进行preclearing以排非特异性吸付。

7)抗体本身待异性不好可能导数者景高,则须选择合适的抗体,可以考虑单抗。

8)使用了过多的细胞或组织进行裂解导致背景高,则须减少样本量,推荐100-500ug细胞裂解物。

9)蛋白降解也可能出现高背景的情况,尽量使用新鲜制备的样品。

 

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